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如何用二氧化碳培養(yǎng)箱進行細(xì)胞復(fù)蘇
點擊次數(shù):1395 更新時間:2020-07-21

如何用二氧化碳培養(yǎng)箱進行細(xì)胞復(fù)蘇

(1) 準(zhǔn)備

   無菌超凈臺,酒精燈,75%酒精噴壺,二氧化碳培養(yǎng)箱,37℃水浴鍋,離心機;培養(yǎng)瓶,含10%胎牛血清的*培養(yǎng)基和基礎(chǔ)培養(yǎng)基以及PBS磷酸緩沖液(提前放置超凈臺使平衡到室溫),無菌工作服(白大褂),*罩,手套,記號筆

(2) 步驟

   1.穿好無菌工作服,帶上*罩和手套,快速從液氮里取出凍存管,快速放進37℃水浴鍋緩慢搖晃使細(xì)胞解凍,注意凍存管的封口膜不要破裂,防止污染。

   2.解凍后用紙擦干凍存管表面的水滴,酒精噴壺噴灑適量75%酒精消毒凍存管封口處。

   3.開超凈臺,點燃酒精燈燃燒片刻后(可提前準(zhǔn)備),凍存管放超凈臺,換新手套,小心打開凍存管,避免污染,無菌吸管將1ml細(xì)胞全部吸出至5ml無菌EP管,補加9ml基礎(chǔ)培養(yǎng)基稀釋,1000rpm,離心5min使細(xì)胞沉淀,棄上清。

   4.加入新鮮配制的含10%血清的培養(yǎng)基4ml,輕輕混勻,用吸管將細(xì)胞移至25T培養(yǎng)瓶。

   5.平躺放置培養(yǎng)瓶,8字形混勻后,置于37℃,5%二氧化碳培養(yǎng)箱培養(yǎng)。

   6.培養(yǎng)24小時后,顯微鏡觀察細(xì)胞(貼壁細(xì)胞)貼壁后,小心更換培養(yǎng)基,根據(jù)不同細(xì)胞的生長狀態(tài)進行傳代培養(yǎng),培養(yǎng)瓶上標(biāo)記:操作者,時間,細(xì)胞類型。

   7.有的實驗員的培養(yǎng)基會加入抗生素防止細(xì)胞污染,但是這對于掌握細(xì)胞培養(yǎng)是非常不利的,不加抗生素培養(yǎng)細(xì)胞更能提醒實驗者無菌操作的意識。一旦細(xì)胞出現(xiàn)污染,易于發(fā)現(xiàn),一旦發(fā)現(xiàn)污染的細(xì)胞應(yīng)立刻煮沸丟棄,以免污染同實驗室其他細(xì)胞。

   8.細(xì)胞長滿90%-100%即可傳代,小心打開培養(yǎng)瓶,瓶口過酒精燈消毒,棄培養(yǎng)基。

   9.加入1mlPBS,潤洗細(xì)胞,重復(fù)3次,棄PBS。

   10.加入4ml*培養(yǎng)基,用無菌吸管小心吹打貼壁細(xì)胞或者用胰蛋白酶消化細(xì)胞使細(xì)胞脫落。

   11.轉(zhuǎn)移1/2脫落的細(xì)胞至新的培養(yǎng)瓶,各瓶補加*培養(yǎng)基至4ml。

   12.小心封口,平躺放置培養(yǎng)瓶,8字形混勻后,置于37℃,5%二氧化碳培養(yǎng)箱培養(yǎng)。

   13.待長滿后,按同樣的方法傳代培養(yǎng)。二  凍存

當(dāng)不需要使用細(xì)胞或者細(xì)胞量足夠時,可以將細(xì)胞凍存起來,供以后實驗用

(1) 準(zhǔn)備自

    細(xì)胞凍存液(20%血清、10%DMSO、70%基礎(chǔ)培養(yǎng)液),梯度降溫盒

(2) 步驟

        1.選取活力好,密度約70%細(xì)胞用于凍存,此時細(xì)胞處于對數(shù)生長期,用于凍存。

        2 .細(xì)胞吹打或者胰酶消化后,轉(zhuǎn)移至無菌EP管,1000rpm里面5min。

        3.棄上清,加入新鮮配制的細(xì)胞凍存液,25T細(xì)胞可以加入2ml細(xì)胞凍存液,分裝2個凍存管,細(xì)胞*密度為5*106-1*107個每ml。

        4.做好標(biāo)記,放入梯度降溫盒(提前平衡至室溫)。

        5.將梯度降溫盒放入-80℃冰箱過夜,DI二天取出凍存管,快速放入液氮保存。

氧化碳培養(yǎng)箱是進行細(xì)胞培養(yǎng)的必要設(shè)備,那么在培養(yǎng)細(xì)胞時有哪些經(jīng)驗是我們可以借鑒的呢?下面讓我們一起來看一下。

1、啟蒙老師的重要性

一般進實驗室都有師兄師姐帶著做,他們就是你做細(xì)胞的啟蒙老師。他們的操作手法、細(xì)節(jié)、理論講解就成了你操作的準(zhǔn)則,如營養(yǎng)液、細(xì)胞瓶的擺放位置;滅菌處理程序;開蓋手法;細(xì)胞吹打手法等等。要學(xué)會他們的正確操作,在DI一次的時候就要重視。

2、像養(yǎng)孩子一樣養(yǎng)細(xì)胞

細(xì)胞真的很脆弱,*好每天都去看看它,以防止出現(xiàn)培養(yǎng)箱缺水、缺二氧化碳、停電、溫度不夠等異?,F(xiàn)象,也好及時解決這些意外,避免重復(fù)實驗帶來的更大痛苦。

3、好細(xì)胞要及時保種

細(xì)胞要分批傳代,這樣即使有一批出了問題,還有一批備用的。像后者一般人可能不容易做到。有一次細(xì)胞污染了,全軍覆沒。當(dāng)時可后悔沒有保種。

4、每種細(xì)胞都有自己的特性,要區(qū)別對待。

細(xì)胞跟人一樣,不同的細(xì)胞,培養(yǎng)特性是不一樣的。培養(yǎng)過程中要細(xì)細(xì)體會。不同細(xì)胞株使用不同的培養(yǎng)基和血清。

如平滑肌細(xì)胞很活躍,喜歡熱鬧,2~3 天就好多人口,而且不太愛吃喝,真是*好養(yǎng)的孩子了。內(nèi)皮細(xì)胞和平滑肌細(xì)胞性格相近,不過它很不講衛(wèi)生,也很邋遢,里面有很多分泌屋,要經(jīng)常換洗才行。RAW264.7 細(xì)胞也很開朗,而且很能吃,要經(jīng)常喂它,頭疼的是細(xì)胞很容易活化,培養(yǎng)它的瓶子和環(huán)境沒有內(nèi)毒素才好。

5、培養(yǎng)前的工作準(zhǔn)備充分

包括耗材的處理、試劑的配置,無菌檢驗等等。
玻璃器皿的清洗。對于玻璃器皿(細(xì)胞瓶、裝營養(yǎng)液的瓶子、小青霉素瓶等)要先用洗衣粉刷干凈(注意死角),然后沖干凈。用酸液浸泡 24 h 以上,之后用清水沖洗 10 遍,除去殘留酸液。瓶子之類,沖洗過程要使勁搖晃。然后在雙蒸水浸泡 24 h。晾干后包扎,160℃ 干烤 2 h 待用。
試劑配置。細(xì)胞培養(yǎng)用的液體一般使用雙蒸以上的水即可。并注意 pH 值的調(diào)節(jié)。
無菌檢驗。主要采用過濾除菌:如胰酶、抗生素、G-418 溶液、各類培養(yǎng)基、丙酮酸鈉、谷氨酰胺等。有些可以采用高壓滅菌:如 PBS、D-Hank's等。

6、試劑分裝保存

包括營養(yǎng)液、胰酶、血清等。

血清特別重要。血清必須貯存于 –20℃,如果一次無法用完一瓶,可將 40~50ml 分裝于無菌酸處理瓶中,甚至置青霉素瓶保存。一般廠商提供的血清為無菌,不需再無菌過濾。若發(fā)現(xiàn)血清有許多懸浮物,則可將血清加入培養(yǎng)基內(nèi)一起過濾,勿直接過濾血清。(一般情況下不影響細(xì)胞培養(yǎng))

瓶裝血清一定要逐步解凍: 4℃ 冰箱全溶后再分裝,在溶解過程中須規(guī)則搖晃均勻(小心勿造成氣泡),使溫度與成分均一,減少沉淀的發(fā)生。勿直接由 –20℃ 直接至 37℃ 解凍,因溫度改變太大,容易造成蛋白質(zhì)凝結(jié)而發(fā)生沉淀。

熱滅活是指 56℃,30 分鐘加熱已*解凍之血清。水浴鍋升到 56℃后,將血清放入,待溫度升高到 56℃ 后計時,一般 5 分鐘左右規(guī)則搖晃均勻一次。此熱處理之目的是使血清中之補體成份去活化。除非必須,一般不要作此熱處理,因為會造成沉淀物之顯著增多,且會影響血清之品質(zhì)。注意更換新血清(包括不同批次)對細(xì)胞的影響。

7、無菌意識要強

實驗進行前,超凈臺以紫外燈照射 30 分鐘滅菌,以 70 % ethanol 擦拭無菌操作抬面,并開啟超凈工作臺風(fēng)扇運轉(zhuǎn)數(shù)分鐘后,才開始實驗操作。

每次操作只處理一株細(xì)胞株,以避免失誤混淆或細(xì)胞間污染。實驗完畢后,將實驗物品帶出工作臺,以 70 % ethanol 擦拭無菌操作抬面。

無菌操作工作區(qū)域應(yīng)保持清潔及寬敞,必要物品,例如支架、吸管等公用物品可以暫時放置,其它個人實驗用品用完應(yīng)立即拿出。實驗用品以 70% 乙醇擦拭后才帶入無菌操作臺內(nèi)。實驗操作應(yīng)在中央無菌區(qū)域,一般勿在邊緣區(qū)域操作。

小心取用無菌之實驗物品,避免造成污染。勿碰觸吸管尖頭部或是容器瓶口,亦不要在打開之容器正上方操作實驗。容器打開后,以手夾住瓶蓋并握住瓶身,傾斜約 45° 角取用,盡量勿將瓶蓋蓋口朝上放置桌面。

8、選擇正確的培養(yǎng)基 

不同的細(xì)胞可能培養(yǎng)基不同,甚至不同的文獻可能對相同的細(xì)胞培養(yǎng)基成分也是可能不同的。如我當(dāng)時培養(yǎng)神經(jīng)干細(xì)胞,有文獻就選用 neurobase 培養(yǎng)基,而我的實驗?zāi)康闹饕亲隹寡趸脱趸矫娴?,而這種培養(yǎng)基中含有抗氧化劑成分,此時,我就不得不選擇另外一種不含抗氧化劑的培養(yǎng)基。

 

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